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斑點氣單胞菌PCR試劑盒的應(yīng)用

2024/1/31 9:04:28

背景[1-3]

斑點氣單胞菌PCR試劑盒是一種用于檢測斑點氣單胞菌的分子診斷試劑盒。該試劑盒基于聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)技術(shù),通過特定的引物擴增斑點氣單胞菌的DNA片段,從而實現(xiàn)對該病原體的快速、準(zhǔn)確檢測。

斑點氣單胞菌PCR試劑盒具有以下特點:

高特異性和靈敏度:試劑盒采用一對特異性引物,能夠高特異地擴增斑點氣單胞菌的DNA片段,同時具有較高的靈敏度,能夠檢測低濃度的斑點氣單胞菌。

快速簡便:該試劑盒操作簡便,可在短時間內(nèi)完成檢測,大大提高了檢測效率。

多種規(guī)格和用途:不同品牌的斑點氣單胞菌PCR試劑盒可能有不同的規(guī)格和用途,可用于科研、臨床診斷等多種領(lǐng)域。

在使用斑點氣單胞菌PCR試劑盒進行檢測時,需要注意以下幾點:

嚴格按照試劑盒說明書進行操作,確保實驗過程的準(zhǔn)確性和可靠性。

注意實驗環(huán)境的清潔和消毒,避免交叉污染。

對于陽性結(jié)果,需要進行復(fù)檢和確證實驗,以排除假陽性或污染的可能性。

對于臨床樣本的檢測,需要結(jié)合患者的臨床表現(xiàn)和其他檢查結(jié)果進行綜合分析,避免誤診或漏診。

斑點氣單胞菌PCR試劑盒.png

斑點氣單胞菌PCR試劑盒

斑點氣單胞菌PCR試劑盒的操作步驟如下:

1.樣本采集:從患者體內(nèi)采集血液、糞便、組織等樣本,并將其保存在無菌容器中。

2.DNA提?。簩⒉杉降臉颖具M行DNA提取,通常采用柱式或磁珠式DNA提取試劑盒。提取后的DNA應(yīng)保存在-20°C或更低的溫度下。

3.PCR反應(yīng)體系準(zhǔn)備:根據(jù)斑點氣單胞菌PCR試劑盒說明書的要求,配制PCR反應(yīng)體系,包括引物、熒光探針、dNTPs、DNA聚合酶等。

4.PCR反應(yīng):將提取的DNA加入到PCR反應(yīng)體系中,進行PCR反應(yīng)。反應(yīng)條件和時間根據(jù)試劑盒說明書的要求進行設(shè)置。

5.結(jié)果分析:將PCR反應(yīng)后的產(chǎn)物進行熒光信號檢測,根據(jù)熒光信號的出現(xiàn)情況判斷是否存在斑點氣單胞菌的感染。

應(yīng)用[4][5]

斑點氣單胞菌PCR試劑盒可以用于大口黑鱸源維氏氣單胞菌的分離鑒定及其對宿主免疫應(yīng)答的影響

隨著大口黑鱸養(yǎng)殖規(guī)模的擴大,在高溫季節(jié),各類病害問題的頻繁發(fā)生已經(jīng)成為制約產(chǎn)業(yè)發(fā)展的一個因素,在高溫季節(jié)維氏氣單胞菌(Aeromonas veronii)引起的大口黑鱸暴發(fā)性死亡近幾年不斷發(fā)生,但目前對于大口黑鱸抗維氏氣單胞菌免疫機制了解甚少。

利用轉(zhuǎn)錄組技術(shù),對高溫脅迫下大口黑鱸感染維氏氣單胞菌死亡率的差異進行探究。此外,基于大口黑鱸全基因組與轉(zhuǎn)錄譜數(shù)據(jù),展開大口黑鱸ASC基因的研究,分析其基因結(jié)構(gòu)與功能、預(yù)測蛋白結(jié)構(gòu)與功能、了解基因表達情況以及細胞定位,為深入開展大口黑鱸抗菌機制研究奠定基礎(chǔ)。

主要研究內(nèi)容如下:大口黑鱸源維氏氣單胞菌的分離鑒定為查明2020年春季廣東省佛山市某養(yǎng)殖場人工養(yǎng)殖大口黑鱸魚苗出現(xiàn)暴發(fā)性死亡的病因,該研究對患病大口黑鱸魚苗肝臟組織中分離的一株細菌GZXR2020進行了斑點氣單胞菌PCR試劑盒分子鑒定,PCR擴增獲得該菌株的16S rRNA基因和gyrB基因全長序列,BLAST顯示其與維氏氣單胞菌的相應(yīng)序列高度同源,同源性分別高于99.5%和98.3%。根據(jù)VITEK2全自動細菌鑒定系統(tǒng)45個理化項目的鑒定結(jié)果、羊血瓊脂平板溶血實驗呈β-溶血的結(jié)果,進一步通過毒力基因檢測并結(jié)合補充理化鑒定結(jié)果,可判斷此分離菌株為維氏氣單胞菌溫和生物型(A.veronii bv.sobria)。人工回歸感染實驗采用低、中、高3種菌液濃度(3×107、1.5×108和3×108CFU·m L-1)進行腹腔注射攻毒,可分別導(dǎo)致7%、40%和100%的死亡率,證實維氏氣單胞菌溫和生物型是引起此次大口黑鱸暴發(fā)性死亡的致病原。藥物敏感性實驗顯示,在所檢測的17種抗菌藥物中,該菌株對大觀霉素、氟羅沙星、氟苯尼考等7種藥物敏感。

參考文獻

[1]Aeromonas spp.diversity in U.S.mid-Atlantic surface and reclaimed water,seasonal dynamics,virulence gene patterns and attachment to lettuce[J].Solaiman Sultana;Micallef Shirley A..Science of the Total Environment,2021

[2]Characterization and expression analysis of tandemly-replicated asc genes in the Japanese medaka,Oryzias latipes[J].Morimoto Natsuki;Okamura Yo;Kono Tomoya;Sakai Masahiro;Hikima Jun-ichi.Developmental and Comparative Immunology,2021

[3]Specific Evolution and Gene Family Expansion of Complement 3 and Regulatory Factor H in Fish[J].Najafpour Babak;Cardoso Jo?o C.R.;Canário Adelino V.M.;Power Deborah M..Frontiers in Immunology,2020

[4]Response of gut microbiota and immune function to hypoosmotic stress in the yellowfin seabream(Acanthopagrus latus)[J].Genmei Lin;;Min Zheng;;Shizhu Li;;Jingui Xie;;Wenyu Fang;;Dong Gao;;Jing Huang;;Jianguo Lu.Science of the Total Environment,2020

[5]楊超.大口黑鱸源維氏氣單胞菌的分離鑒定及其對宿主免疫應(yīng)答的影響[D].上海海洋大學(xué),2023.

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